АКТИВНОСТЬ МАРКЕРОВ КЛЕТОК КРОВИ ПРИ ПИЕЛОНЕФРИТЕ И ВВЕДЕНИИ ЭРИТРОЦИТАРНОЙ ФОРМЫ ЦЕФТРИАКСОНА

АКТИВНОСТЬ МАРКЕРОВ КЛЕТОК КРОВИ ПРИ ПИЕЛОНЕФРИТЕ И ВВЕДЕНИИ ЭРИТРОЦИТАРНОЙ ФОРМЫ ЦЕФТРИАКСОНА

1 Профессор, доктор медицинских наук, Курский государственный медицинский университет, 2 доцент, доктор медицинских наук, Курский государственный медицинский университет, 3 аспирант, Курский государственный медицинский университет, 4 кандидат фармацевтических наук, Курский государственный медицинский университет, 5 профессор, доктор фармацевтических наук, Курский государственный медицинский университет, 6 ORCID: 0000-0003-0195-8950, профессор, доктор биологических наук, Курский государственный медицинский университет

АКТИВНОСТЬ МАРКЕРОВ КЛЕТОК КРОВИ ПРИ ПИЕЛОНЕФРИТЕ И ВВЕДЕНИИ ЭРИТРОЦИТАРНОЙ ФОРМЫ ЦЕФТРИАКСОНА

Аннотация

При экспериментальном гематогенном ипелонефрите у крыс резко изменялась активность маркеров клеток: угнетение активности НАДФ-оксидазы нейтрофилов, Mg 2+ – АТФазы эритроцитов, снижение концентрации ФДФ в лимфоцитах и повышение содержания МДА в тромбоцитах. Системное введение цефтриаксона животным с пиелонефритом достоверно снижало активность метаболических маркеров нейтрофилов, лимфоцитов, эритроцитов и повышало уровень МДА в тромбоцитах. Введение эритроцитарной формы цефтриаксона нормализовало нарушенную при пиелонефрите активность метаболических маркеров: повышалась активность Mg 2+ – АТФазы эритроцитов, НАДФН- оксидазы лейкоцитов, ФДФ в лимфоцитах и снижался уровень МДА в тромбоцитах.

Ключевые слова: маркеры клеток, экспериментальный пиелонефрит, эритроцитарная форма цефтриаксона.

Bratchikov O.I. 1 , Sipliviyi G.V. 2 , Ipatov V.Yu. 3 , Kukureka A.V. 4 , Yatsuk V.Ya. 5 , Siplivaya L.E. 6

1 Professor, MD, Kursk State Medical University; 2 Assosiate professor, MD, Kursk State Medical University; 3 Postgraduate student, Kursk State Medical University; 4 PhD in Pharmaceutics, Kursk State Medical University; 5 Professor, PhD in Pharmaceutics, Kursk State Medical University; 6 ORCID: 0000-0003-0195-8950, Professor, PhD in Biology, Kursk State Medical University

ACTIVITY OF MARKERS OF BLOOD CELLS IN PYELONEPHRITIS AND THE INTRODUCTION OF ERYTHROCYTE FORMS CEFTRIAXONE

Abstract

In experimental hematogenous ipelonefrite rats dramatically altered cell activity markers inhibition activity of NADPH oxidase of neutrophils, Mg 2 + – ATPase activity of red blood cells, reducing the concentration of FDF in lymphocytes and increase MDA content in platelets. Systemic administration of ceftriaxone animals with pyelonephritis significantly reduced the activity of metabolic markers of neutrophils, lymphocytes, red blood cells and increases the level of MDA in platelets. Introduction cell form of ceftriaxone in pyelonephritis normalized impaired activity of metabolic markers: increased activity of Mg 2 + – ATPase activity of red blood cells, white blood cells NADFN- oxidase, FDF in lymphocytes and decreased the level of MDA in platelets.

Keywords: markers of cells, experimental pyelonephritis, erythrocyte form of ceftriaxone.

Пиелонефрит – одно из самых распространенных заболеваний у человека и занимает второе место после острых респираторных инфекций. Пиелонефрит является основой глубоких морфологических и энзимопатических нарушений в почках, что в свою очередь вызывает системные иммунометаболические изменения [1]. В регуляции механизмов иммунологической защиты организма при пиелонефрите принимают участие нейтрофилы, лимфоциты, эритроциты, тромбоциты. Метаболическим маркером нейтрофилов может служить активность НАДФН-оксидазы, лимфоцитов – концентрация фруктозы-2,6-дифосфата (ФДФ), эритроцитов – активность Mg +2 -АТФ-азы, тромбоцитов – содержание МДА.

Цель работы. Выяснить влияние эритроцитарной формы цефтриаксона на активность маркеров клеток крови при экспериментальном пиелонефрите.

Материалы и методы. Исследования проведены на белых беспородных крысах массой 180 – 200 г. Все животные содержались в одинаковых условиях, на обычном пищевом рационе. Для получения статистически достоверных результатов группы формировались из 9 животных, примерно одного возраста. Разброс в группах по исходной массе не превышал 10%. Все исследования проводили в одно и то же время суток с 8.00 до 12.00 с соблюдением принципов, изложенных в Конвенции по защите позвоночных животных, используемых для экспериментальных и других целей (г. Страсбург, Франция, 1986). Экспериментальный пиелонефрит моделировали путем однократного внутрижелудочного введения ртути дихлорида 2 мг/кг и внутривенной инъекции предварительно оттитрованных доз суточной агаровой культуры Staphylococcus aureus, содержащих 1×10 8 микробных тел в 0,5 мл раствора.

Для подтверждения развития необструктивного пиелонефрита проведены определения клинических показателей (масса и температура тела), лабораторных и гематологических показателей (количество и соотношение форменных элементов крови, концентрации мочевины и креатинина в крови) [2], морфологических и энзиматических изменений в почках.

В работе в качестве антибактериального препарата использовали цефтриаксон (Индия). При системном введении цефтриаксон вводили в дозе 15 мг/кг внутривенно, однократно.

Для включения цефтриаксона в строму эритроцитов (ЭН) использовали метод гипоосмотического гемолиза, позволяющий ввести максимально возможное количество препаратов (эритроцитарная форма) [3, С. 19-20], [4, С. 54-56]. В части опытов в инкубационную среду добавляли АТФ в количестве 0,5 мл.

Определение цефтриаксона в биоматериале проводили по нормативной документации на субстанцию препарата (высокоэффективной жидкостной хроматографией).

Активность НАДФН-оксидазы определяли спектрофотометрической методикой на спектрофотометре СФ 2000. Использовали квадратные кюветы с толщиной слоя 10 мм. Объем пробы равнялся 3 мл. В состав пробы входили Na-K-фосфатный буфер, гомогенат клеток (1 млн/мл), субстрат НАДФН (0,5 нмоль/мл). Контрольная проба не содержала субстрата. Определение проводили при комнатной температуре. Активность фермента оценивали по скорости НАДФН-оксигеназной реакции, рассчитываемой по убыли поглощения НАДФН (за счет его окисления) при длине волны 340 нм [5, С. 14-18].

Тромбоциты из крови выделяли по методике, описанной Ермолаевой Т.А. с соавторами [6, С. 33-38]. Метаболический маркер тромбоцитов МДА определяли по методике Негреску Е.В. с соавторами [7, С. 36-39].

Лимфоциты периферической крови выделяли по Т.В. Федосеевой с соавторами и определяли в них содержание ФДФ [8, С. 232-237].

Показателем активности эритроцитов может служить Mg 2+ -ATФаза, которую определяли по методике Рыжковой Г.Ф. и Вишнякова С.И. [9].

Статистическую обработку результатов исследования проводили путем вычисления средних арифметических изучаемых показателей (M) и их стандартных ошибок (m). Существенность различий средних величин оценивали по критериям Стьюдента и Вилкоксона-Манна-Уитни [10].

Результаты исследования и их обсуждения.

Установлено, что введение ртути дихлорида совместно с микробным агентом вызывало развитие необструктивного гематогенного пиелонефрита, подтверждающееся клиническими показателями: гипертермия, снижение веса на 12-14%, нарушение выделительной функции почек (табл. 1).

Таблица 1 – Изменение функциональных показателей у животных с необструктивным пиелонефритом

Группа Показатель Контроль (здоровые крысы) Введение ртути дихлорида и стафилококка Температура тела, o С 41,5±0,5 43,8±0,4 Масса тела, г 153,4±11,8 125,2±10,3 Мочевина, ммоль/л 132,4±13,2 278±27,1* Креатинин, ммоль/л 11,8±1,4 37,5±3,6*

Примечание: * указывает на достоверность различий между группами (p≤0,05).

Анализ выделительной функции почек показал резкое повышение уровня в крови мочевины в 1,75-2,2 раза и креатинина в 1,8-3,2 раза, появление лейкоцитов и белка в моче (табл. 1).

Установлены изменения лейкоцитарной формулы – увеличение количества лейкоцитов на 30-35%, уменьшение количества лимфоцитов на 20-24% и повышение количества нейтрофилов крови на 21-23%. В почках отмечено снижение активности СДГ, ГДГ, ЩФ в 1,9-2,3 раза, на фоне высокой активности ЛДГ, выявлены морфологические изменения (очаговые скопления лейкоцитов в виде микроабсцессов) (рис. 1). В ходе приготовления гистологических препаратов использовалась окраска гематоксилином и эозином. При окраске цитоплазма клеток окрашивается в розовый цвет, ядра в фиолетовый.

Анализ патологических изменений в мозговом слое почек показал многочисленные очаговые некрозы, местами разрушенные канальцы и на их месте очаговые скопления лейкоцитов – микроабсцессы.

Рис. 1 – Морфологические изменения в препаратах почек при пиелонефрите. Окраска гематоксилином и эозином

Примечание: увеличение ×400

У животных с пиелонефритом отмечено значительное подавление активности НАДФН-оксидазы нейтрофилов, Mg 2+ -АТФазы эритроцитов, снижение концентрации ФДФ в лимфоцитах и повышение содержания МДА в тромбоцитах.

Системное введение цефтриаксона животным с пиелонефритом достоверно снижало активности метаболических маркёров нейтрофилов, лимфоцитов, эритроцитов и повышало уровень МДА в тромбоцитах. В связи с полученными данными интересно было изучить влияние эритроцитарной формы цефтриаксона на функциональную активность клеток при пиелонефрите. Установлено, что введение ЭН с включенными антибактериальным препаратом повышало активности НАДФ-оксидазы нейтрофилов, Mg 2+ -АТФазы эритроцитов, концентрацию ФДФ в лимфоцитах и снижало содержание МДА в тромбоцитах (табл. 2).

Таблица 2 – Влияние эритроцитарной формы цефтриаксона на показатели функциональной активности клеток крови при пиелонефрите

Примечание: * и цифра рядом в этой и последующих таблицах указывают на достоверность различий между группами (p≤0,05).

Обмен макроэргических соединений в эритроцитах в значительной степени определяется активностью мембранных АТФаз, осуществляющих энергозависимый перенос ионов через цитоплазматическую мембрану клеток. Особый интерес представляют Mg +2 – АТФаза, «накачивающая» в эритроциты ионы магния, активирующие большинство ферментов гликолиза [11] и в форме Mg-АТФаз, повышающие активность Na + , K + и Ca 2+ .

В связи с изложенным большой интерес представляло выяснение влияния ЭН с иммобилизованным в присутствии или без АТФ цефтриаксоном на активность Mg +2 -АТФазы мембраны эритроцитов. Оказалось, что активность Mg +2 -АТФазы повышалась только в случае введения ЭН с включенным в присутствии АТФ цефтриаксоном. Полученные результаты подтверждают, что необходимым условием активации Mg +2 -АТФаз мембраны эритроцитов служит увеличение биологической доступности, вследствие возможного образования органических комплексов с АТФ (табл. 3).

Таблица 3 – Активность Mg +2 -АТФазы в строме эритроцитов крыс, получавших инъекции ЭН с иммобилизованным в присутствии АТФ цефтриаксоном

Таким образом, установлено, что введение клеточной формы (эритроцитарной) цефтриаксона нормализовало нарушенную при пиелонефрите активность метаболических маркеров: повышало активности Mg 2+ -АТФазы эритроцитов, НАДФН-оксидазы лейкоцитов, ФДФ в лимфоцитах и снижало уровень МДА в тромбоцитах.

Установленные изменения могут быть рекомендованы в качестве дополнительных критериев для прогнозирования иммунометаболической активности клеточных форм химиопрепаратов в условиях необструктивного пиелонефрита.

Список литературы / References

  1. Есилевский Ю.М. Патогенез пиелонефрита / Ю.М. Есилевский. -М.: МЕДпресс-информ, 2007. – 368 с.
  2. Меньшиков В.В. Лабораторные методы исследования в клинике: справочник /ред. В.В. Меньшиков. – М.: Медицина, 1987. – 365 с.
  3. Генинг Т.П. Фармакокинетика антибиотика, вводимого в организм в клеточных носителях / Т.П. Генинг, К.К. Мануйлов // Антибиотики и химиотерапия. – 1991. – № 9. – С. 19-20.
  4. Жумадилов Ж.Ш. Особенности включения некоторых антибиотиков в эритроцитарные тени – систему целенаправленной доставки химиотерапевтических препаратов / Ж.Ш. Жумадилов, Р.В. Макаренкова // Антибиотики и химиотерапия. – 1990. – Т. 35, № 11, – С. 54-56.
  5. Рыбников В.Н. Иммуномодулирующее действие эритроцитов и их стромы инкубированных с менадионом и гетерополисахаридами Poligonaceae при острой кровопотере / В.Н. Рыбников, И.Л. Бровкина, М.Г. Газазян // Антибиотики и химиотерапия. – 2003. – Т.48, №4. – С. 14-18.
  6. Ермолаева Т.А. Методы выделения из крови интактных тромбоцитов / Т.А. Ермолаева, О.Г. Головина, В.М. Пономаренко // Лабораторное дело. -1991. – № 10. – С. 33-38.
  7. Негреску Е.В. Антиоксиданты, перекисное окисление липидов и рецепторзависимое увеличение концентрации Са 2+ в тромбоцитах человека / Е.В. Негреску, А.В. Лебедев, Г.Н. Балденков и др. // Вопросы медицинской химии. – 1992. – Т. 38, вып. 1.- С. 36-39.
  8. Коровкин Б.Ф. Изменение содержания фруктозо-2,6-бифосфата в лимфоцитах периферической крови больных сахарным диабетом // Б.Ф. Коровкин, Н.Ф. Беляева, С.А. Краевой и др. // Вопросы медицинской химии. -1999.- Т. 45, вып. 3. – С. 232-237.
  9. Рыжкова Г.Ф. Методическое пособие по выделению, очистке и определению активности транспортных АТФаз в органах и тканях животных / Г.Ф. Рыжкова, С.И. Вишняков. – Воронеж, 2005. – 31 с.
  10. Гублер Б.В. Вычислительные методы анализа и распознавания патологических процессов / Е.В. Гублер. – Л.: Медицина, 1978. – 294 с.
  11. Ленинджер А. Основы биохимии / А. Ленинджер // М.: Мир. – 1985, Т.1. – 365 с.

Список литературы на английском языке / References in English

📎📎📎📎📎📎📎📎📎📎